FL6000Dubbele modulatie chlorofyl fluorescentiemeter

FL6000De dubbelmoduleerde chlorofluorometer is de nieuwste upgradeversie van de FL3500 dubbelmoduleerde chlorofluorometer, een krachtig wetenschappelijk hulpmiddel dat speciaal is ontworpen voor diepgaand onderzoek naar de mechanismen van fotosynthese van microalgen, chloroflooden of cyst suspensies zoals blauwgroene of groene algen. Het instrument is voorzien van tweekanalige meetregeling, die de temperatuur van het meetmonster kan regelen, en is uitgerust met een enkelvoudig flip-licht (STF), ingebouwd met een verscheidenheid aan meetprocedures die de gebruiker zelf kan aanpassen, en kan verschillende diepgaande mechanismen van chlorofluorescentie uitvoeren op dit moment op internationaal niveau. De kernstructuur is een optische meetkop met een standaard steekproefbeker voor suspensie, 3 ingebouwde sets LED-lichtbronnen en 1 1MHz/16-bit AD-omgezette PIN-diode-signaaldetector. De winst en de credittijd van de AD-conversie kunnen worden gecontroleerd door middel van de software. De detector meet chlorofluorescentiesignalen met een tijdsresolutie van maximaal 4 µs (1µs in de snelle versie).
Toepassingsgebieden:
·Plantfotosynthetische eigenschappen en metabolische stoornissen screening
·Detectie van biologische en niet-biologische dwang
·Onderzoek naar het vermogen of de gevoeligheid van planten tegen druk
·Metabolische chaos onderzoek
·Onderzoek naar het werkmechanisme van fotosynthetische systemen
·Onderzoek naar fotofysiologische strategieën voor gedwongen plantensynthese

Typische monsters:
·Blauwe algen (blauwe bacteriën)
·Groene algen
·Klorogroene suspensie
·Cystische suspensie
·Planten fragmenten
Functie kenmerken:
·Ingebouwde chlorofluorescentie-induceerde meting, PAM-meting (pulsmodulatie), OJIP-snelle fluorescentiedynamische meting, QA-re-oxidatiedynamiek, S-statusconversie, chlorofluorescentie-uitschakeling en andere meetprogramma's zijn de meest uitgebreide chlorofluorescentiemeter ter wereld
·Dubbele modulatie-technologie, met dubbele kleur-modulatie voor het meten van licht, met modulatie van fotochemisch licht en continu fotochemisch licht, voor STF (single-cycle flash), TTF (double-cycle flash) en MTF (multi-cycle flash) metingen en aangepaste FRR-technologie (Fast Repetition Rate)
·Standaard versie tijdresolutie tot 4 µs, Fast versieTot 1 µs, de hoogste tijdsresolutie van de huidige chlorofluorometer
·Controle-eenheid is tweekanalig, kan worden aangesloten op een temperatuursensor voor temperatuurregeling, verbinding zuurstofmeting voor het meten van de Hill-reactie enz.
·Uitstekende gevoeligheid met een minimale detectiegrens van 100 ng Chla/L
·Het meten van licht, het optomatiseren van licht, de kleur en intensiteit van verzadigde enkelvoudige reflectieve lichtbronnen kunnen worden aangepast
·De host is voorzien van een kleuren touchscreen voor het bekijken van fluorescentiecurven in realtime
Technische parameters:
·Experimentele procedure: meting van het fluorescentie-induceerde effect van Kautsky-chlorofyl; PAM (pulsmodulatie)Dynamiek van fluorescentiemeting; OJIP snelle fluorescentiedynamische meting; QA - Reoxidatiedynamiek; S staat conversie; Snelle chlorofyl fluorescentie inductie
Fluorescentieparameters:
uPAMMeting van de dynamiek van de fluorescentie-kalping: meet de dynamische curve van de fluorescentie-kalping, kan F worden berekend0Het is Fm, Fv, F.0’,Fm’,Fv’,QY(II),NPQ,ΦPSII,Fv/Fm,Fv’/Fm’,Rfd,qN,qP,ETRMeer dan 50 chlorofyl fluorescentie parameters;
uOJIPSnelle fluorescentiedynamische meting: meet de snelle fluorescentiedynamische curve van OJIP, waarmee F kan worden berekend0FJ, Fi, Fm, Fv, VJ, Vi, Fm / F0van FV/F0Fv/Fm, M0, gebied, vaste gebied, SM, SS, N, Phi_P0van Psi_0De Phi_E0De Phi_D0van Phi_Pav, ABS/RC, TR0/ RCen ET0/ RCvan DI0/ RCMeer dan 20 relevante parameters;
uQAQA-reoxidatie kinetiek: het meten van de QA-reoxidatie kinetiek curve voor het passen van de respectievelijke amplitudes (A1, A2, A3) en tijdconstante (T1, T2, T3) in QA-reoxidatie.
uDe SS-state test: meet de fluorescentieafval curve van de S-state test voor de berekening van inactief lichtsysteem II (PSII)XAantal reactiecentra
uFlash Fluorescence Induction (FFL, alleen Fast Edition): voor geschikte berekening van effectief antenneoppervlak, antenneverbinding enz.
uAangepaste protocolfuncties voor PSII-antenneheterogeniteitαmet PSIIβAnalyse, PSII effectieve antenne doorsnede oppervlakte (sPSIIMeting van andere parameters (optionele aangepaste functies)

uQA– Reoxidatiedynamische curve enS-staat testFluorescentieafvalcurve (Li,2010)
·Tijdresolutie (monsterfrequentie): hooggevoelige detector met een standaard tijdsresolutie van 4 µs en een snelle versie van 1 µs
·Minimale detectiegrens: 100ng Chla/L in de standaardversie, 1μg Chla/L in de snelversie
·Controle: met kleuren-touchscreen voor het bekijken van fluorescentiecurven in realtime

·Meetkamer:
ofMeten van flitsen: 623nm rood oranje licht en 460nm blauw licht, flitstijd 2-5µs
ofEnkel-omloop verzadigde lichtflits: maximale lichtintensiteit 170.000 µmol (fotonen) / m².s, flitstijd 20-50 µs
ofPersistent fotochemisch licht: maximale lichtintensiteit 3500 µmol (fotonen)/m².s
ofFluorescentie detector: PIN fotodiode
oADOmzetter: 16bit
oSteekproefbuis: bodem oppervlakte 10 x 10mm, volume 4ml
Meetkamer op maat (optioneel): Afzonderlijke lichtkleuren, verzadigde lichtflitsen en fotochemische lichtkleuren (blauw, blauw, amber, enz.) en detectiebanden (ChlA, ChlB) kunnen worden aangepast
Verre infraroodlichtbron (optioneel): voor het meten van F0Golflengte van 730 nm
·Zuurstofmeetmodule (optioneel): het meten van de zuurstofvrijgave van algen
·Temperatuurregeling (optioneel): TR 6000 temperatuurregelaar, temperatuurbereik 5-60 °C, nauwkeurigheid 0,1 °C
Elektromagnetische roer (optioneel): voor het mengen van monsters, het voorkomen van monster neerslag, kan handmatig worden geregeld snelheid of software automatische regeling
Communicatie: RS232 Seriële poort / USB
FluorWinSoftware: experimentele schema's definiëren of maken, instellingen voor lichtbronbeheer, data-output, analytische verwerking en grafische weergave

Typische toepassingen:
1. Wang Qiang, een onderzoeker van het Institut voor Aquatische Biologie van de Chinese Academie van Wetenschappen, heeft aangetoond met behulp van de FL3500 chlorofluorometer (model voor FL6000) en het TL-plant thermische vrijlatingssysteem dat nitriet-stress eerst de receptorzijde van Synechocystis sp. PCC 6803 PSII beïnvloedt (Zhan X, et al, 2017). De studie van deze diepgaande mechanismen van fotosynthese vereist vaak dat beide instrumenten worden gecombineerd.

2.Pan Rong Liang, onderzoeker van het Xinjiang Ecologisch en Geografisch Instituut van de Chinese Academie van Wetenschappen, en zijn onderwerpgroep gebruikten de FL3500 chlorofluorescentiemeter (model vóór FL6000) om diepgaand onderzoek uit te voeren naar de toxiciteit van zware metalen, zouten, giftige verbindingen, herbiciden, insecticiden, antibiotica en andere schadelijke stoffen voor algen in het milieu. Met behulp van de FL3500-unieke OJIP-snelle fluorescentiedynamische meting met hoge resolutie, QA-reoxidatiedynamiek, S-statusconversie en andere chlorofluorescentie-metingsprocedures worden de toxiciteitsmechanismen en de ecologische effecten van verschillende concentraties en behandelingstijden die schade veroorzaken aan het algenfotosynthesesysteem uitgebreid onthuld. Op dit moment heeft de Pan Rong Subject Group meer dan twintig artikelen op hoog niveau gepubliceerd in zowel internationale SCI-tijdschriften als nationale kerntijdschriften met behulp van de FL3500 (voormalig model FL6000).

Plaats van herkomst: Tsjechië
Referenties:
1. Manaa A, et al. 2019. Saliniteitstolerantie van quinoa (Chenopodium quinoaWilld) zoals beoordeeld door chloroplast ultrastructuur en fotosynthetische prestaties. Milieu- en Experimentele Botaniek 162: 103-114
2. Yu Z, et al. 2019. Gevoeligheid van Chlamydomonas reinhardtii voor cadmiumstress wordt geassocieerd met fototaxis. Milieuwetenschappen: processen en effecten 21: 1011-1020
3. Liang Y, et al. 2019. Moleculaire mechanismen van temperatuuracclimatie en aanpassing bij mariene diatomen. Het ISME-tijdschrift, DOI: 10.1038/s41396-019-0441-9
4. Orfanidis S, et al. 2019. Oplossing van eutrofisering van nuisance cyanobacteriën door middel van biotechnologie. Toegepaste Wetenschappen 9(12): 2566
5. Sicora C I, et al. 2019. Regeling van de PSII-functie inCyanothecesp. ATCC 51142 tijdens een lichtdonkere cyclus. Fotosyntheseonderzoek 139(1-3): 461-473
6. Smythers A L, et al. 2019. Het effect van Poast opvan Chlorella vulgariseen niet-doelorganisme. Chemosfeer 219: 704-712
7. Albanese P, et al. 2018. Thylacoïd proteoom modulatie in erwtenplanten gekweekt bij verschillende bestralingen: kwantitatieve proteomische profilering in een niet-modelorganisme ondersteund door transcriptomische gegevensintegratie. Het Plantenblad 96(4): 786-800
8. Antal T, Konyukhov I, Volgusheva A, et al. 2018. Chlorofil fluorescentie inductie en ontspanning systeem voor de continue monitoring van de fotosynthetische capaciteit in fotobioreactoren. Het is Physiol Plantarum. DOI: 10.1111/ppl.12693
9. Antal T K, Maslakov A, Yakovleva O V, et al. 2018.Simulatie van chlorofyl fluorescentie stijging en verval kinetiek, en P700-gerelateerde absorptie veranderingen met behulp van een regel-gebaseerde kinetische Monte-Carlo-methode. Fotosyntheseonderzoek. DOI: 10.1007/s11120-018-0564-2
10.Biswas S, Eaton-Rye J J, et al. 2018. PsbY is vereist voor het voorkomen van fotoschade aan fotosysteem II in een PsbM-ontbrekende mutant vanSynechocystissp. PCC 6803. Fotosynthetica, 56(1), 200-209.
11.Bonisteel E M, et al. 2018. Stamspecifieke verschillen in de snelheden van Photosystem II-reparatie in picocyanobacteriën correleren met verschillen in FtsH-eiwitniveaus en isoform-expressiepatronen. PLoS ONE 13(12): e0209115.
12.Fang X, et al. 2018. Transcriptomische reacties van de mariene cyanobacterieProchlorococcusVirale lyseproducten. Milieumicrobiologie, doi: 10.1101/394122.
13.Kuthanová Trsková E, Belgio E, Yeates A M, et al. 2018. Antenne proton gevoeligheid bepaalt fotosynthetische lichtoogst strategie, Journal of Experimental Botany 69(18): 4483-4493
